Listeria Enrichment Broth
Бульон обогащения для листерий |
М569
|
Selective Agar (Twin Pack) Селективный агар для листерий (двухкомпонентные среды) |
M567 |
Эти среды используют для культивирования и селективного обогащения видов Listeria из клинического материала.
Ингредиенты
|
М569
грамм/литр |
М567
грамм/литр |
Часть А:
|
||
Гидролизат казеина
|
10,00
|
10,00
|
Пептический перевар животной ткани
|
10,00
|
10,00
|
Глюкоза
|
1,00
|
1,00
|
Натрия хлорид
|
5,00
|
5,00
|
Тиамина дихлорид
|
0,005
|
0,005
|
Акрифлавина гидрохлорид (Трипафлавин)
|
0,01
|
0,01
|
Налидиксовая кислота
|
–
|
0,04
|
Агар-агар
|
–
|
13,00
|
Часть В:
|
||
Калия роданид
|
37,50
|
37,50
|
Конечное значение рН (при 25°С) 7,4 ± 0,2
|
|
|
** Состав выверен и доведен до соответствия необходимым параметрам
Размешать 26,0 г порошка части А (М569) или 39,0 г порошка части А (М567) и 37,5 г порошка части В в 1000 мл дистиллированной воды. Подогреть до кипения для полного растворения частиц. Стерилизовать автоклавированием при 1,1 атм (121°С) в течение 15 мин.
Эти среды предложены Feindt (1) для культивирования и выделения видов Listeria из клинического и другого материала. Obiger и Schonberg (2) показали преимущества этих сред при выделении листерий из смешанных культур.
Гидролизат казеина и пептический перевар животной ткани являются источником необходимых питательных веществ для роста листерий. Тиамин (витамин группы В) стимулирует рост листерий. Роданид и налидиксовая кислота подавляют рост грамотрицательных бактерий (3, 4). Как показал Bockemuhl (5), комбинация селективных веществ и акридиновых красителей подавляет рост энтерококков. Для выделения листерий Ralovich (6), Kampelmacher и Van Noorle Jansen (7) рекомендовали применять комбинацию акрифлавина гидрохлорида и налидиксовой кислоты. Бульон обогащения для листерий можно улучшить, добавив в него, помимо налидиксовой кислоты, колимицин (8). Контаминированные образцы засевают в Бульон обогащения для листерий непосредственно или проводят холодовое обогащение (9) в Триптозном бульоне (М179), после чего культуры отсевают на Селективный агар для листерий. Гемолиз можно проверить путем высева на Кровяной агар (М073).
Часть А:
Гомогенный сыпучий желтый порошок.
Часть В:
Гомогенный сыпучий белый порошок.
Образуется среда, соответствующая по плотности 1,3%-ному агаровому гелю (М567).
Готовая среда имеет желтую окраску, прозрачна или слегка опалесцирует, если в пробирках или чашках Петри формируется гель.
При 25°С водные растворы М567 (3,9% вес/об части А + 3,75% вес/об части В) и М569 (2,6% вес/об части А + 3,75% вес/об части В) имеют рН 7,4 ± 0,2.
Ростовые характеристики референс-штаммов через 48 ч при 37°С (при возможности, в услових атмосферы, содержащей 10% углекислого газа).
Штаммы микроорганизмов (АТСС)
|
Рост
|
Listeria monocytogenes (19112)
|
Обильный
|
Enterococcus faecalis (29212)
|
Отсутствует
или слабый |
Escherichia coli (25922)
|
Подавляется
|
1. Feindt E., 1972, Inuug. Diss., Wurzburg.
2. Obiger G. and Schonberg A., 1973, Fleischwirtschaft, 10:1450.
3. Lebnert C., 1964, Arch. Exp. Vet. Med., 18:891 and 1247.
4. Beerens H. and Tahon-Castel M.M., 1966, Ann. Inst. Pasteur, 111:90.
5. Bockemuhl J., Seeliger H.P.R. and Kathke R., 1971, J. Med. Microbiol. Imm. 157:84.
6. Ralorich B., et al, 1971, Zbl. Bakt. I.Orig., 216:88.
7. Kampelmacher E.H. and Van Noorle-Jansen L.M., 1972, Zbl. Bakt. J. Orig., 221:139.
8. Le Guilloux M., 1980, Bull. Soc. Vet. Prat. de France, 64:45.
9. Grey M.L. et al, 1948, J. Bact., 55:471.
Порошок хранить при температуре ниже +25°С. Использовать до даты, указанной на этикетке. Готовую среду хранить при температуре +2…8°С.