C.L.E.D. Agar (with Bromo Thymol Blue)
Лактозо-цистиновый агар (с бромтимоловым синим) |
M792
|
C.L.E.D. Agar (with Bromo Thymol Blue) without indicator Лактозо-цистиновый агар (с бромтимоловым синим) без индикатора |
М1146 |
Среду используют для выделения, подсчета и идентификации возбудителей мочевых инфекций (по ферментации лактозы).
![]() |
C.L.E.D. Agar with Bromothymol Blue (M792)
|
Ингредиенты
|
М792
грамм/литр |
М1146
грамм/литр |
Пептический перевар животной ткани
|
4,00
|
4,00
|
Гидролизат казеина
|
4,00
|
4,00
|
Мясной экстракт
|
3,00
|
3,00
|
Лактоза
|
10,00
|
10,00
|
L-Цистин
|
0,128
|
0,128
|
Бромтимоловый синий
|
0,02
|
–
|
Агар-агар
|
15,00
|
15,00
|
Конечное значение рН (при 25°С) 7,3 ± 0,2
|
|
|
** Состав выверен и доведен до соответствия необходимым параметрам
Размешать 36,15 г порошка М792 в 1000 мл дистиллированной воды или 36,1 г порошка М1146 в 998 мл дистиллированной воды. Добавить к среде М1146 растворенное в воде содержимое 1 флакончика с индикаторной добавкой (FD091). Прокипятить для полного растворения частиц. Стерилизовать автоклавированием при 1,1 атм (121°С) в течение 15 мин.
По данным Sandys (1), роение протеев на плотной среде можно ограничить путем уменьшения количества электролитов в среде. Ранее такого эффекта добивались введением в среду алкоголя, поверхностно-активных веществ, азида натрия, борной кислоты и т.д. (1). Позже среда была модифицирована Mackey и Sandys (2), которые заменили маннит на лактозу и сахарозу, повысили концентрацию агара и бромтимолового синего. Эти же авторы затем изменили состав среды, назвав ее CLED (Cystine-Lactose-Electrolyte-Deficient): из состава была выведена сахароза и включен цистин, который обеспечивает рост карликовых цистинзависимых колиформных бактерий (3). Эту среду рекомендуют для клинических исследований мочи микробиологическим методом.
Пептический перевар животной ткани, гидролизат казеина и мясной экстракт обеспечивают запас питательных веществ в среде. Лактоза является дифференцирующим углеводом. Цистин способствует росту карликовых колоний колиформных бактерий. Бромтимоловый синий является индикатором рН, который желтеет в кислой среде.
Степень бактериурии на этой среде можно определять, высевая мочу в соответствующих разведениях. Посевы рекомендуется делать сразу после получения пробы мочи. На этой среде может отсутствовать рост шигелл. Обсемененность мочи зависит от ряда факторов и может оказаться заниженной (на фоне антибиотикотерапии, при кислых значениях рН и т.д.).
Гомогенный сыпучий желтый порошок.
Образуется среда, соответствующая по плотности 1,5%-ному агаровому гелю.
Готовая среда имеет зеленую окраску, слегка опалесцирует, если в чашках Петри формируется гель.
При 25°С водные растворы М792 или М1146 (3,61% вес/об) имеют рН 7,3 ± 0,2.
Ростовые характеристики референс-штаммов через 18-24 ч при 35-37°С.
Штаммы микроорганизмов (АТСС)
|
Рост
|
Цвет
колоний |
Escherichia coli (25922)
|
Обильный
|
Непрозрачные желтоватые с желтым центром
|
Klebsiella pneumoniae (13883)
|
Обильный
|
Желтые или беловато-голубые
|
Proteus vulgaris (13315)
|
Обильный
|
Голубые
|
Salmonella typhi (6539)
|
Обильный
|
Голубоватые
|
Staphylococcus aureus (25923)
|
Обильный
|
Ярко-желтые
|
Enterococcus faecalis (29212)
|
Обильный
|
Слегка желтоватые или зеленоватые
|
1. Sandys, 1960, J. Med. Lab. Technol., 17:224.
2. Mackey and Sandys, 1965, Br. Med. J., 2:1286.
3. MacKey and Sandys, 1966, Br. Med. J., 1:1173.
Порошок хранить при температуре ниже +25°С. Использовать до даты, указанной на этикетке. Готовую среду хранить при температуре +2…8°С.