| C.L.E.D. Agar (with Bromo Thymol Blue) Лактозо-цистиновый агар (с бромтимоловым синим) | M792 | 
| C.L.E.D. Agar (with Bromo Thymol Blue) without indicator Лактозо-цистиновый агар (с бромтимоловым синим) без индикатора | М1146 | 
Среду используют для выделения, подсчета и идентификации возбудителей мочевых инфекций (по ферментации лактозы).
|  | C.L.E.D. Agar with Bromothymol Blue (M792) 
 | 
| Ингредиенты | М792  грамм/литр | М1146  грамм/литр | 
| Пептический перевар животной ткани | 4,00 | 4,00 | 
| Гидролизат казеина | 4,00 | 4,00 | 
| Мясной экстракт | 3,00 | 3,00 | 
| Лактоза | 10,00 | 10,00 | 
| L-Цистин | 0,128 | 0,128 | 
| Бромтимоловый синий | 0,02 | – | 
| Агар-агар | 15,00 | 15,00 | 
| Конечное значение рН (при 25°С) 7,3 ± 0,2 |  |  | 
** Состав выверен и доведен до соответствия необходимым параметрам
Размешать 36,15 г порошка М792 в 1000 мл дистиллированной воды или 36,1 г порошка М1146 в 998 мл дистиллированной воды. Добавить к среде М1146 растворенное в воде содержимое 1 флакончика с индикаторной добавкой (FD091). Прокипятить для полного растворения частиц. Стерилизовать автоклавированием при 1,1 атм (121°С) в течение 15 мин.
По данным Sandys (1), роение протеев на плотной среде можно ограничить путем уменьшения количества электролитов в среде. Ранее такого эффекта добивались введением в среду алкоголя, поверхностно-активных веществ, азида натрия, борной кислоты и т.д. (1). Позже среда была модифицирована Mackey и Sandys (2), которые заменили маннит на лактозу и сахарозу, повысили концентрацию агара и бромтимолового синего. Эти же авторы затем изменили состав среды, назвав ее CLED (Cystine-Lactose-Electrolyte-Deficient): из состава была выведена сахароза и включен цистин, который обеспечивает рост карликовых цистинзависимых колиформных бактерий (3). Эту среду рекомендуют для клинических исследований мочи микробиологическим методом.
Пептический перевар животной ткани, гидролизат казеина и мясной экстракт обеспечивают запас питательных веществ в среде. Лактоза является дифференцирующим углеводом. Цистин способствует росту карликовых колоний колиформных бактерий. Бромтимоловый синий является индикатором рН, который желтеет в кислой среде.
Степень бактериурии на этой среде можно определять, высевая мочу в соответствующих разведениях. Посевы рекомендуется делать сразу после получения пробы мочи. На этой среде может отсутствовать рост шигелл. Обсемененность мочи зависит от ряда факторов и может оказаться заниженной (на фоне антибиотикотерапии, при кислых значениях рН и т.д.).
Гомогенный сыпучий желтый порошок.
Образуется среда, соответствующая по плотности 1,5%-ному агаровому гелю.
Готовая среда имеет зеленую окраску, слегка опалесцирует, если в чашках Петри формируется гель.
При 25°С водные растворы М792 или М1146 (3,61% вес/об) имеют рН 7,3 ± 0,2.
Ростовые характеристики референс-штаммов через 18-24 ч при 35-37°С.
| Штаммы микроорганизмов (АТСС) | Рост | Цвет  колоний | 
| Escherichia coli (25922) | Обильный | Непрозрачные желтоватые с желтым центром | 
| Klebsiella pneumoniae (13883) | Обильный | Желтые или беловато-голубые | 
| Proteus vulgaris (13315) | Обильный | Голубые | 
| Salmonella typhi (6539) | Обильный | Голубоватые | 
| Staphylococcus aureus (25923) | Обильный | Ярко-желтые | 
| Enterococcus faecalis (29212) | Обильный | Слегка желтоватые или зеленоватые | 
1. Sandys, 1960, J. Med. Lab. Technol., 17:224. 
 2. Mackey and Sandys, 1965, Br. Med. J., 2:1286. 
 3. MacKey and Sandys, 1966, Br. Med. J., 1:1173.
Порошок хранить при температуре ниже +25°С. Использовать до даты, указанной на этикетке. Готовую среду хранить при температуре +2…8°С.