HiMedia: инструкция по применению продукции По всем вопросам обращаться: Почтовый адрес: 124498, Москва, а/я 130. Офис: 123007, Москва, Хорошевское шоссе, д. 13 а, кор.3. Тел/Факс: +7 (495) 940 33 12, 940 33 13, 940 33 14,940 33 96, 940 33 97, 940 33 98. E-mail: himedia@himedialabs.ru Наш сайт: www.himedialabs.ru
Muller Hinton Agar (HiCrome) Агар Мюллера Хинтона (ХайХром) Продукция зарегистрирована в Министерстве здравоохранения Российской Федерации (ФСЗ 2009/03707)		Кат. № M2010R

ХайХром хромогенный агар Мюллера Хинтона используется для скрининг - определения чувствительности к антимикробным препаратам с помощью диско-диффузионного метода и одновременной дифференциации микроорганизмов в исследуемом материале на основе хромогенных субстратов.

Состав**:
Ингредиенты	грамм/литр
Казеина гидролизат кислотный	20,00
Хромогенная смесь	1,50
Агар	17,00
Конечное значение рН (при 250С)  7,3 ± 0,1

**Состав выверен и доведён до соответствия необходимым параметрам.

 

	Клинический материал: раневое отделяемое
	Гексадиск: HX091
	CD- Клиндамицин
	E- Эритромицин
	GEN- Гентамицин
	LE- Левофлоксацин
	OX- Оксациллин
	VA- Ванкомицин
	Выделенные микроорганизмы: A.baumannii, Streptococcus spp., Enterococcus spp.

 Более подробно можно посмотреть здесь: ссылка

Приготовление:

Размешать 38,50 грамма порошка в 1000 мл дистиллированной воды. Нагреть до кипения для полного растворения компонентов среды. Стерилизовать автоклавированием при 121⁰С в течение 15 минут. Остудить до 45-50⁰С. Хорошо перемешать и разлить в стерильные чашки Петри.

Принцип и оценка результатов:

Среда Мюллера Хинтона первоначально была разработана для культивирования патогенных штаммов Neisseria (1). Впоследствии была разработана другая среда для культивирования патогенных штаммов Neisseria, а среда Мюллера Хинтона стала использоваться для определения чувствительности гонококков и других микроорганизмов к сульфаниламидным препаратам. В настоящее время  эта среда применяется как тестовая для определения чувствительности микроорганизмов к антимикробным препаратам. (2).

Кислотный гидролизат казеина обеспечивает азотными соединениями, углеродом, серой и другими необходимыми питательными веществами. Эти ингредиенты выбраны с учётом низкого содержания тимина и тимидина в среде, стандартизованного для определения МИК сульфаметоксазола триметоприм для Enterococcus faecalis.

Включённая в состав среды хромогенная смесь позволяет провести дифференциацию колоний по их цвету. Один из хромогенных субстратов расщепляется бактериальной β-глюкозидазой, что приводит к окрашиванию колоний энтерококков в синий цвет. E.coli образуют колонии от розового до фиолетового при воздействии фермента β-D-галактозидазы на другой субстрат хромогенной смеси. Staphylococcus aureus образует бесцветные или желтые колонии. Pseudomonas aeruginosa даёт колонии с зеленоватым пигментированием. Klebsiella и Enterobacter продуцируют синии с металлическим блеском колонии. Колонии Proteus, Morganella и Providencia характеризуются коричневым цветом.

Таким образом среда может использоваться как для дифференциации (в первую очередь уропатогенов) микроорганизмов в исследуемом материале, так и для скрининг – определения чувствительности этих микроорганизмов к антимикробным препаратам.

Контроль качества:

Внешний вид порошка:

Гомогенный сыпучий порошок от кремового до желтого цвета.

Цвет и прозрачность готовой среды:

После остывания до комнатной температуры среда прозрачна, слегка опалесцирует и имеет светло-янтарную окраску.

Кислотность среды:

При 25ºС водный раствор (3,85% вес/об) имеет рН 7,3 ± 0,1.

Культуральные свойства:

Ростовые характеристики референс-штаммов через 18-24 часов инкубации при 35-37⁰С.

Штаммы микроорганизмов (АТСС)	Инокулюм (КОЕ)	Рост	Высеваемост ь	Цвет колоний
Escherichia coli (25922)	50	Обильный	≥70%	Розовые –пурпурные
Pseudomonas aeruginosa (27853)	50	Обильный	≥70%	Зеленоватый пигмент
Staphylococcus aureus (25923)	50	Обильный	≥70%	Бесцветные – золотистые
Enterococcus faecalis (29212)	50	Обильный	≥70%	Синие
Klebsiella pneumoniae (13883)	50	Обильный	≥70%	Синие с металлическим блеском
Интерпретация: рост культуры как обильный, хороший, слабый, скудный или отсутствие роста, выраженный в % выросших колоний по отношение к количеству засеянных микроорганизмов: Рост культуры (посевная доза 10 2-10 3 КОЕ/мл):   % от засеянных Обильный: >70 %; Хороший: > 40 % но <70 %; Плохой: > 20 % но <40 %; Скудный – слабый: > 10 % но <20%; Скудный: > 10 %; Нет роста: нет видимых колоний

 Литература:

1. Mueller J. H. and Hinton J., 1941, Proc. Soc. Exp. Biol. Med., 48:330.

2. National Committee for Clinical Laboratory Standards, 2000, Approved Standard: M7-A5. Methods for Dilution Antimicrobial Susceptibility Tests for Bacteria that grow aerobically, 5th Ed., NCCLS, Wayne, Pa.

Условия и сроки хранения:

Порошок хранить при температуре ниже +2-8ºС. Использовать до даты, указанной на этикетке. Готовую среду хранить при температуре +2-8ºС.